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Bioprocédés en traitement de l’air - Modélisation des bioréacteurs| Réf : IN186 v1
Auteur(s) : Eric MARECHAL
Date de publication : 10 févr. 2015
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Production industrielle de microalgues et cyanobactériesCet article fait partie de l’offre
Bioprocédés et bioproductions (153 articles en ce moment)
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3.1 Manipulation au laboratoire
Les microalgues peuvent être manipulées dans un laboratoire classique de microbiologie disposant de systèmes de culture éclairés. Après leur collecte dans le milieu naturel, par exemple suite à des campagnes d'exploration océanique telles que la mission Tara Océan, la première tâche est de réussir à isoler une microalgue d'intérêt de tout contaminant, phase dite d'« axénisation », par des dilutions successives dans des milieux stériles, en présence d'antibiotiques, et en cherchant à démarrer une culture à partir de microalgues propres. Il existe plusieurs milieux de culture, dont une eau de mer artificielle, plus ou moins enrichis en nutriments, par exemple en phosphate, azote, ou même en matière organique comme source supplémentaire de carbone.
Exemple : préparation d'eau de mer artificielle (enriched artificial seawater – ESAW)
Ce protocole a été établi par le Canadian Center for the Culture of Microorganisms et est considéré comme une référence. Quatre solutions séparées sont préparées, deux solutions de sels (solutions 1 et 2, tableaux 2 et 3), une solution de nutriments et une solution de vitamines. Les sels sont ajoutés dans l'ordre dans de l'eau distillée stérile (EDS). Quand les sels sont complètement dissous, les solutions 1 et 2 sont mélangées. Toutes les solutions sont filtrées sur fibre de verre stérile de 0,45 μM de vide de maille. Les fioles sont lavées avec de l'acide chlorhydrique (10 % HCl) et rincées dans de l'EDS avant usage. Pour 1 L de solution filtrée de sels (solutions 1 + 2), 1 mL des solutions a, b, d, e et f et 2 mL de la solution c de nutriments sont ajoutés, ainsi que 2 mL de la solution stock de vitamines (tableaux 4 et 5). Afin de réduire les risques de précipitation pendant la stérilisation à l'autoclave, 1,44 mL d'HCl 1N et 0,12 g de bicarbonate de sodium sont ajoutés.
L'eau de mer artificielle ainsi obtenue est finalement stérilisée par autoclave.
La figure 10 montre les différentes échelles de culture qu'il est possible de mener en...
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(1) - PETROUTSOS (D.), AMIAR (S.), ABIDA (H.), DOLCH (L.-J.), BASTIEN (O.), REBEILLE (F.), JOUHET (J.), FALCONET (D.), BLOCK (M.A.), McFADDEN (G.I.), BOWLER (C.), BOTTE (C.), MARECHAL (E.) - Evolution of galactoglycerolipid biosynthetic pathways. From cyanobacteria to primary plastids and from primary to secondary plastids. - Progress in Lipid Research, 54, p. 68-85 (2014).
(2) - LEVITAN (O.), DINAMARCA (J.), HOCHMAN (G.), FALKOWSKI (P.G.) - Diatoms : a fossil fuel of the future. - Trends in Biotechnology, 32, p. 117-124 (2014).
(3) - BEISSON (F.), LI-BEISSON (Y.), PELTIER (G.), FINAZZI (G.), MARECHAL (E.), CHAUVAT (F.), DELRUE (F.), FROMENT (K.), BLET (V.) - Des microalgues pour la production des biocarburants. - Les clefs du CEA. Les énergies bas carbone, 61, p. 42-49 (2013).
(4) - CHISTI (Y.) - Biodiesel from microalgae. - Biotechnology Advances, 25, p. 294-306 (2007).
(5) - RAZZAK (S.A.), HOSSAIN (M.M.), LUCKY (R.A.), BASSI (A.), BASSI (S.), DE LASSA (H.) - Integrated CO2 capture, wastewater treatment and biofuel production...
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