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Biocristallographie - Cristallisation et collecte des donnéesArticle de référence | Réf : P1111 v2
ARTICLE INTERACTIF
Auteur(s) : Jean CAVARELLI
Date de publication : 10 déc. 2018
Relu et validé le 23 oct. 2020
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Le terme de remplacement moléculaire représente une famille de techniques dont l’objet est d’utiliser la présence d’une macromolécule, d’une sous-unité de macromolécule, ou d’un fragment de macromolécule, dans différents environnements cristallographiques, pour déterminer ou améliorer des phases initiales.
C’est la méthode de choix lorsque la macromolécule à étudier (molécule cible) est parente à une autre, dont la structure tridimensionnelle est connue (molécule sonde). Environ 60 % des structures actuellement déposées à la PDB (§ 8) ont été résolues par cette méthode de phasage. Ce qui est important ici, c’est la parenté structurale, c’est-à-dire la similitude du repliement tridimensionnel. Cette similarité structurale est en général mise en évidence par des méthodes d’analyse des séquences. La méthode du remplacement moléculaire n’utilise que les modules des facteurs de structures de la protéine native sans nécessité d’ajout d’atomes supplémentaires. Pour utiliser cette méthode, on doit disposer :
d’un espace complet de diffraction pour la molécule X dont on cherche à déterminer la structure tridimensionnelle ;
de la structure d’une molécule M que l’on suppose être parente à X, c’est-à-dire que les deux molécules sont supposées avoir un repliement tridimensionnel commun (partiellement ou complètement).
Le terme remplacement moléculaire est à vrai dire impropre et on devrait plutôt utiliser le terme de placement moléculaire car il s’agit en fait de placer une molécule connue dans la maille cristalline de la molécule à résoudre. Chaque molécule dans l’unité asymétrique est caractérisée par son orientation et sa position, soit par 6 paramètres. Si l’unité asymétrique contient N molécules, il s’agit donc d’un problème...
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(1) - GRIMES (J.M.), HALL (D.R.), ASHTON (A.W.), EVANS (G.), OWEN (R.L.), WAGNER (A.), McAULEY (K.E.), VON DELFT (F.), ORVILLE (A.M.), SORENSEN (T.) et al - Where is crystallography going? - Acta Crystallogr D. Struct. Biol., 74, p. 152-166 (2018).
(2) - MACKAY (J.P.), LANDSBERG (M.J.), WHITTEN (A.E.), BOND (C.S.) - Whaddaya know: a guide to uncertainty and subjectivity in structural biology. - Trends in Biochemical Sciences, 42, p. 155-167 (2017).
(3) - SAYERS (Z.), AVSAR (B.), CHOLAK (E.), KARMOUS (I.) - Application of advanced X-ray methods in life sciences. - Biochimica et biophysica acta., 1861, p. 3671-3685 (2017).
(4) - CHENG (R.K.Y.), ABELA (R.), HENNIG (M.) - X-ray free electron laser: opportunities for drug discovery. - Essays Biochem, 61, p. 529-542 (2017).
(5) - SPENCE (J.) - XFELs for structure and dynamics in biology. - IUCrJ, 4, p. 322-339 (2017).
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Biologie structurale intégrative
à l’échelle européenne, Instruct-ERIC https://www.structuralbiology.eu
une infrastructure francaise, FRISBI http://frisbi.eu
Pipelines de références en biocristallographie
CCP4. Une chaîne de programmes collaborative http://www.ccp4.ac.uk
Phenix http://www.phenix-online.org
Global Phasing Limited http://www.globalphasing.com
HKL3000 http://www.hkl-xray.com
Accès aux données
Base de données PDB (RCSB) http://www.rcsb.org
Comprendre la PDB https://pdb101.rcsb.org
Bibliographie plus générale
http://jean.cavarelli.free.fr/bsi/progs/xray_progs.html
HAUT DE PAGE
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• systèmes experts: xia2, autoproc
Phasage MIR, MAD, SAD
• SHARP, SOLVE, CRANK2,SHELX
Remplacement moléculaire :
• Phaser, Molrep, AMoRe,...
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